Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Tình trạng kháng kháng sinh và đặc điểm phân tử của kháng tetracycline điều hòa bởi các gen tet(M) và tet(L) ở Enterococcus spp. phân lập từ thực phẩm tại miền Nam Brazil
Tóm tắt
Enterococcus spp. là những tác nhân gây bệnh cơ hội có mặt rộng rãi trong môi trường tự nhiên. Hai đặc điểm nổi bật của enterococci là khả năng kháng nội tại đối với một số tác nhân kháng sinh thường được chỉ định trong điều trị vi khuẩn Gram dương, và khả năng to lớn để thu nhận các dấu hiệu di truyền khác nhau thông qua hiện tượng giao phối. Mục tiêu của nghiên cứu này là đánh giá tần suất kháng kháng sinh và tần số các gen tet(M) và tet(L) trong 112 mẫu chủng Enterococcus spp. được phân lập từ thực phẩm. Năm mươi hai chủng (64%) của Enterococcus faecalis, 10 (55%) của Enterococcus faecium, 2 (66%) của Enterococcus casseliflavus và 3 (42%) của Enterococcus gallinarum cho thấy tình trạng kháng đa thuốc. Gen tet(M) có liên kết với hoặc không có gen tet(L) đã được phát hiện là kiểu gen phổ biến nhất trong thực phẩm. Chín chủng enterococci kháng erythromycin và nhạy cảm với tetracycline mang các gen tet(M) hoặc tet(L) bị ức chế đã có mặt trong nghiên cứu của chúng tôi. Kết luận, enterococci kháng kháng sinh hiện có trong thực phẩm có thể đóng vai trò là một reservoir của các chủng kháng, tạo ra một con đường tiềm ẩn cho việc truyền các gen qua hiện tượng chuyển gen nằm ngang.
Từ khóa
#Enterococcus spp. #kháng sinh #kháng tetracycline #gen tet(M) #gen tet(L) #thực phẩm #BrazilTài liệu tham khảo
Aarestrup FM, Agersø Y, Gerner-Smidt P (2000) Comparison of antimicrobial resistance phenotype and resistance genes in Enterococcus faecalis and Enterococcus faecium from humans in the community broilers, and pigs in Denmark. Diagn Microbiol Infect Dis 37:195–203. doi:10.1016/S0732-8893(00)00130-9
Brenciani A, Bacciaglia A, Vecchi M, Vitali LA, Varaldo PE, Giovanetti E (2007) Genetic elements carrying erm(B) in Streptococcus pyogenes and association with tet(M) tetracycline resistance gene. Antimicrob Agents Chemother 51(4):1209–1216. doi:10.1128/AAC.01457-07
Cauwerts K, Decostere A, De Graef EM, Haesebrouck F, Pasmans F (2007) High prevalence of tetracycline resistance in Enterococcus isolates from broilers carrying the erm(B) gene. Avian Pathol 36(5):395–399. doi:10.1080/03079450701589167
Chopra I, Roberts M (2001) Tetracycline antibiotics: mode of action, applications, molecular biology, and epidemiology of bacterial resistance. Microbiol Mol Biol Rev 65:232–260. doi:10.1128/mmbr.65.2.232-260.2001
d’Azevedo PA, Dias CA, Teixeira LM (2006) Genetic diversity and antimicrobial resistance of enterococcal isolates from Southern region of Brazil. Rev Inst Med Trop São Paulo 48(1):11–16
De Leener E, Martel A, Decostere A, Haesebrouck F (2004) Distribution of the erm(B) gene, tetracycline resistance genes, and Tn1545-like transposons in macrolide- and lincosamide-resistant enterococci from pigs and humans. Microb Drug Resist 10(4):341–345. doi:10.1089/mdr.2004.10.341
Duarte RS, Bellei BC, Miranda OP, Brito MAVP, Teixeira LM (2005) Distribution of antimicrobial resistance and virulence-related genes among Brazilian Group B Streptococci recovered from bovine and human sources. Antimicrob Agents Chemother 49:97–103. doi:10.1128/AAC.49.1.97-103.2005
Fisher K, Phillips C (2009) The ecology, epidemiology and virulence of Enterococcus. Microbiology 155:1749–1757. doi:10.1009/mic.0.026385-0
Furtado GHC, Martins ST, Coutinho AP, Soares GMM, Wey SB, Servolo EA (2005) Incidence of vancomycin-resistant Enterococcus at a university hospital in Brazil. Rev Saúde Pública 39:1–5
Giraffa G (2003) Functionality of enterococci in dairy products. Int J Food Microbiol 88:215–222. doi:10.1016/S0168-1605(03)00183-1
Gomes BC, Esteves CT, Palazzo ICV, Darini ALC, Felis GE, Sechi LA, Franco BDGM, Martinis ECP (2008) Prevalence and characterization of Enterococcus spp. isolated from Brazilian foods. Food Microbiol 25(5):668–675. doi:10.1016/j.fm.2008.03.008
Hagen RM, Gauthier YP, Sprague LD, Vidal DR, Zysk G, Finke EJ, Neubauer H (2002) Strategies for PCR based detection of Burkholderia pseudomallei DNA in paraffin wax embedded tissues. Mol Pathol 55:398–400
Huys G, D’Haene K, Collard JC, Swings J (2004) Prevalence and molecular characterization of tetracycline resistance in Enterococcus isolates from food. Appl Environ Microbiol 70:1555–1562. doi:10.1128/aem.70.3.1555-1562.2004
Jacobsen L, Wilcks A, Hammer K, Huys G, Dirk G, Andersen SR (2007) Horizontal transfer of tet(M) and erm(B) resistance plasmids from food strains of Lactobacillus plantarum to Enterococcus faecalis JH2–2 in the gastrointestinal tract of gnotobiotic rats. FEMS Microbiol Ecol 59:158–166. doi:10.1111/j.1574-6941.2006.00212.x
Johnston LM, Jaykus L (2004) Antimicrobial resistance to Enterococcus species isolated from produce. Appl Environ Microbiol 70:3133–3137. doi:10.1128/aem.70.5.3133-3137.2004
Kak V, Chow JW (2002) Acquired antibiotic resistances in enterococci. In: Gilmore MS, Clewell DB, Courvalin P, Dunny GM, Murray BE, Rice LB (eds) The enterococci: pathogenesis, molecular biology, and antibiotic resistance. ASM Press, Washington, pp 355–363
Kobashi Y, Hasebe A, Nishio M, Uchiyama H (2007) Diversity of tetracycline resistance genes in bacterial isolated from various agricultural environmental. Microbes Environ 22(1):44–51
Lukasova J, Sustackova A (2003) Enterococci and antibiotic resistance. Acta Vet Brno 72:315–323
Mannu L, Paba A, Daga E, Comunian R, Zannetti S, Duprè I, Sacchi LA (2003) Comparison of the incidence of virulence determinants and antibiotic resistance between Enterococcus faecium of animal and clinical origin. Int J Food Microbiol 88:291–304. doi:10.1016/S0168-1605(03)00191-0
Martel A, Meulenaere V, Devriese LA, Decostere A, Haesebrouck F (2003) Macrolide and lincosamide resistance in the Gram positive nasal and tonsillar flora of pigs. Microb Drug Resist 9:293–297. doi:10.1089/107662903322286508
Martineau F, Picard FJ, Lansac N, Menard C, Roy PH, Ouellette M, Bergeron MG (2000) Correlation between the resistance genotype determined by multiplex PCR assays and the antibiotic susceptibility patterns of Staphylococcus aureus and Staphylococcus epidermidis. Antimicrob Agents Chemother 44:231–238
McDougal LK, Tenover F, Lee LN, Rasheed JK, Patterson JE, Jorgensen JH, Leblanc DJ (1998) Detection of Tn917-like sequences within a Tn916-like conjugative transposon (Tn3872) in erythromycin-resistant isolates of Streptococcus pneumoniae. Antimicrob Agents Chemother 42:2312–2318
Peters J, Mac K, Wichmann-Schauer H, Klein G, Ellerbroek L (2003) Species distribution and antibiotic resistance patterns of enterococci isolated from food of animal origin in Germany. Int J Food Microbiol 88:311–314. doi:10.1016/S0168-1605(03)00193-4
Poeta P, Costa D, Saenz N, Klibi N, Ruiz-Larrea F, Rodrigues J, Torre C (2005) Characterization of antibiotic resistance genes and virulence factors in faecal enterococci of wild animals in Portugal. J Vet Med 52:396–402. doi:10.1111/j.1439-0450.2005.00881.x
Riboldi GP, Mattos EP, Frazzon APG, d’Azevedo PA, Frazzon J (2008) Phenotypic and genotypic heterogeneity of Enterococcus species isolated from food in Southern Brazil. J Basic Microbiol 48:31–33. doi:wiley.com/10.1002/jobm.200700226
Rizzotti L, La Gioia F, Dellaglio F, Torriani S (2009) Molecular diversity and transferability of the tetracycline resistance gene tet(M), carried on Tn916–1545 family transposons, in enterococci from a total food chain. Antonie Van Leeuwenhoek 96:43–52. doi:10.1007/s10482-009-9334-7
Roberts MC (2005) Update on acquired tetracycline resistance genes. FEMS Microbiol Lett 245:195–203. doi:10.1016/j.femsle.2005.02.034
Sapkota AR, Ojo KK, Roberts MC, Schwab KJ (2006) Antibiotic resistance genes in multidrug-resistant Enterococcus spp. and Streptococcus spp. recovered from the indoor air of a large-scale swine-feeding operation. Lett Appl Microbiol 43:534–540. doi:10.1111/j.1472-765X.2006.01996.x
Stovcik W, Javorsky P, Pristas P (2008) Antibiotic resistance patterns and resistance genes in Enterococci isolated from sheep gastrointestinal tract in Slovakia. Bull Vet Inst Pulawy 52:53–57