Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Khảo sát huyết thanh và các yếu tố rủi ro liên quan đến kháng thể chống Toxocara spp. ở gia súc từ các lò mổ ở miền đông nam Brazil
Tóm tắt
Toxocariasis, do một loài giun tròn thuộc chi Toxocara gây ra, được mô tả là một trong những bệnh giun ký sinh có nguồn gốc zoonotic phổ biến nhất trên toàn cầu. Con người có thể bị truyền bệnh thông qua việc tiêu thụ ấu trùng Toxocara spp. từ thịt hoặc nội tạng sống hoặc chưa được nấu chín; tuy nhiên, đến nay chưa có nghiên cứu khảo sát huyết thanh tổng thể nào điều tra vai trò của gia súc như là các vật chủ paratenic. Mục tiêu của nghiên cứu được báo cáo ở đây là đánh giá tỷ lệ kháng thể chống Toxocara spp. và các yếu tố rủi ro liên quan ở gia súc từ hai lò mổ nằm ở Presidente Prudente, miền đông nam Brazil. Mẫu máu được thu thập và kiểm tra bằng phương pháp enzyme liên kết miễn dịch gián tiếp (ELISA). Người chăn nuôi gia súc đã tự nguyện trả lời một bảng câu hỏi dịch tễ học. Tổng cộng, 213 trong số 553 (38,5%) mẫu gia súc được đánh giá là dương tính với kháng thể chống Toxocara spp. qua phương pháp ELISA gián tiếp. Phân tích đa biến cho thấy nguồn gốc của gia súc thịt và sự hiện diện của chó hoặc mèo ở trang trại có liên quan đến tình trạng dương tính. Việc sử dụng hệ thống chăn nuôi nhốt đã liên quan đến khả năng thấp hơn về tình trạng dương tính. Các kết quả này chỉ ra mức độ kháng thể chống Toxocara rất cao ở gia súc tại lò mổ, với thịt có khả năng bị ô nhiễm đặt ra nguy cơ nhiễm trùng cho con người. Thêm vào đó, sự hiện diện của chó và mèo ở nơi nuôi dưỡng gia súc thịt đã bị giết mổ có sự liên hệ thống kê với tình trạng dương tính của gia súc, có thể là do môi trường chồng chéo tại trang trại và sự thiếu hụt việc xổ giun cho thú cưng. Việc sử dụng hệ thống chăn nuôi nhốt là một yếu tố bảo vệ có khả năng do không có sự tiếp xúc với chó và mèo, vị trí máng ăn cao giúp tránh tiếp xúc với đất hoặc cỏ ô nhiễm, và tuổi đời trẻ hơn khi giết mổ với gia súc thịt chăn nuôi nhốt. Tóm lại, gia súc có thể được sử dụng như những người giám sát môi trường về sự ô nhiễm Toxocara spp., và tỷ lệ kháng thể cao ở gia súc tại lò mổ có thể chỉ ra nguy cơ tiềm ẩn đối với bệnh toxocariasis ở người thông qua việc tiêu thụ thịt sống hoặc chưa nấu chín bị ô nhiễm.
Từ khóa
Tài liệu tham khảo
Ma G, Holland CV, Wang T, Hofmann A, Fan C-K, Maizels RM, et al. Human toxocariasis. Lancet Infect Dis. 2018;18(1):e14-24.
U.S. Centers for Disease Control and Prevention (CDC). Toxocariasis. https://www.cdc.gov/parasites/toxocariasis/. Accessed 5 Jan 2021
Rostami A, Riahi SM, Holland CV, Taghipour A, Khalili-Fomeshi M, Fakhri Y, et al. Seroprevalence estimates for toxocariasis in people worldwide: a systematic review and meta-analysis. PLoS Negl Trop Dis. 2019;13(12):e0007809. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0007809.
Gavignet B, Piarroux R, Aubin F, Millon L, Humbert P. Cutaneous manifestations of human toxocariasis. J Am Acad Dermatol. 2008;59(6):1031–42.
Poulsen CS, Skov S, Yoshida A, Skallerup P, Maruyama H, Thamsborg SM, et al. Differential serodiagnostics of Toxocara canis and Toxocara cati—is it possible? Parasite Immunol. 2015;37(4):204–7.
Arslan F, Baysal NB, Aslan A, Simsek BC, Vahaboglu H. Toxocara related peritonitis: a case report and review of literature. Parasitol Int. 2019;1(73):101950.
Zibaei M, Alemi M, Cardillo NM, Derafshi H, Miahipour A, Bahadory S, et al. Human toxocariasis seroprevalence among patients with uveitis in Alborz Province. Iran Ann Agric Environ Med. 2019;26(1):154–8. https://doi.org/10.26444/aaem/102293.
Nicoletti A. Neurotoxocariasis. Adv Parasitol. 2020;109:219–31.
Mitsuhashi Y, Naitou K, Yamauchi S, Naruse H, Matsuoka Y, Nakamura-Uchiyama F, et al. A case of the myelitis due to Toxocara canis infection complicated with cervical spondylosis. No Shinkei Geka. 2006;34(11):1149–54.
Mitamura M, Fukuoka M, Haruta Y, Koarada S, Tada Y, Nagasawa K. A case of visceral larva migrans due to Toxocara canis showing varied manifestations. Kansenshogaku Zasshi [J Japanese Assoc Infect Dis]. 2007;81(3):305–8.
Yoshikawa M, Nishiofuku M, Moriya K, Ouji Y, Ishizaka S, Kasahara K, et al. A familial case of visceral toxocariasis due to consumption of raw bovine liver. Parasitol Int. 2008;57(4):525–9.
Choi D, Lim JH, Choi D-C, Lee KS, Paik SW, Kim S-H, et al. Transmission of Toxocara canis via ingestion of raw cow liver: a cross-sectional study in healthy adults. Korean J Parasitol. 2012;50(1):23–7.
Kwon HH. Toxocariasis: a rare cause of multiple cerebral infarction. Infect Chemother. 2015;47(2):137–41.
Deshayes S, Bonhomme J, de La Blanchardière A. Neurotoxocariasis: a systematic literature review. Infection. 2016;44(5):565–74.
Karaca I, Mentes J, Nalçacı S. Toxocara neuroretinitis associated with raw meat consumption. Turkish J Ophthalmol. 2018;1(48):258–61.
Holland CV. Knowledge gaps in the epidemiology of Toxocara: the enigma remains. Parasitology. 2017;144(1):81–94.
Strube C, Heuer L, Janecek E. Toxocara spp. infections in paratenic hosts. Vet Parasitol. 2013;193(4):375–89.
Lloyd S. Seroprevalence of Toxocara canis in sheep in Wales. Vet Parasitol. 2006;137(3–4):269–72.
Santarém VA, Chesine PAF, Lamers BEL, Rubinsky-Elefant G, Giuffrida R. Anti-Toxocara spp. antibodies in sheep from southeastern Brazil. Vet Parasitol. 2011;179(1–3):283–6. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2011.01.050.
Kantzoura V, Diakou A, Kouam MK, Feidas H, Theodoropoulou H, Theodoropoulos G. Seroprevalence and risk factors associated with zoonotic parasitic infections in small ruminants in the Greek temperate environment. Parasitol Int. 2013;62(6):554–60.
Rassier GL, Borsuk S, Pappen F, Scaini CJ, Gallina T, Villela MM, et al. Toxocara spp. seroprevalence in sheep from southern Brazil. Parasitol Res. 2013;112(9):3181–6.
Heredia R, Romero C, Mendoza GD, Ponce M, Carpio JC. Identifying anti-Toxocara IgG antibodies in horses of Mexico. Arq Bras Med Vet Zootec. 2018;70(1):1–5.
Campos-da-Silva DR, da Paz JS, Fortunato VR, Beltrame MAV, Valli LCP, Pereira FEL. Natural infection of free-range chickens with the ascarid nematode Toxocara sp. Parasitol Res. 2015;114(11):4289–93.
von Söhsten AL, da Silva AV, Rubinsky-Elefant G, Guerra LMS de MEM. Anti-Toxocara spp IgY antibodies in poultry sold in street markets from Feira de Santana, Bahia, Northeastern Brazil. Vet Parasitol Reg Stud Rep. 2017;8:86–9. https://doi.org/10.1016/j.vprsr.2017.02.006
de Oliveira AC, Rubinsky-Elefant G, Merigueti YFFB, Batista A da S, Santarém VA. Frequency of anti-Toxocara antibodies in broiler chickens in southern Brazil. Rev Bras Parasitol Vet. 2018;27(2):141–5.
Brasil/ São Paulo/ Presidente Prudente. Instituto Brasileiro de Geografia e Estatística. 2019. https://cidades.ibge.gov.br/brasil/sp/presidente-prudente/pesquisa/18/16459. Accessed 5 May 2021
Hebbali A. Tools for developing binary logistic regression models [R package blorr version 0.3.0]. 2020. https://cran.r-project.org/package=blorr. Accessed 5 Jan 2021
Savigny DH. In vitro maintenance of Toxocara canis larvae and a simple method for the production of Toxocara ES antigen for use in serodiagnostic tests for visceral larva migrans. J Parasitol. 1975;61(4):781–2.
Elefant GR, Shimizu SH, Sanchez MCA, Jacob CMA, Ferreira AW. A serological follow-up of toxocariasis patients after chemotherapy based on the detection of IgG, IgA, and IgE antibodies by enzyme-linked immunosorbent assay. J Clin Lab Anal. 2006;20(4):164–72.
Lowry OH, Rosebrough NJ, Farr AL, Randall RJ. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J Biol Chem. 1951;193(1):265–75.
Rubinsky-Elefant G, Hirata CE, Yamamoto JH, Ferreira MU. Human toxocariasis: diagnosis, worldwide seroprevalences and clinical expression of the systemic and ocular forms. Ann Trop Med Parasitol. 2010;104(1):3–23.
Ueno H, Gonçalves PC. Manual para diagnóstico de helmintoses de ruminantes. Tokyo, Japan: Japan International Cooperation Ageny (JICA); 1998.
Pecinali NR, Gomes RN, Amendoeira FC, Bastos ACMP, Martins MJQA, Pegado CS, et al. Influence of murine Toxocara canis infection on plasma and bronchoalveolar lavage fluid eosinophil numbers and its correlation with cytokine levels. Vet Parasitol. 2005;134(1–2):121–30.
Agresti A, Coull BA. Approximate is better than “Exact” for interval estimation of binomial proportions. Am Stat. 1998;52(2):119–26.
The R project for statistical computing. https://www.r-project.org/. Accessed 5 Jan 2021.
Manning C. Logistic regression (with R). 2007. http://nlp.stanford.edu/manning/courses/ling289/logistic.pdf.. Accessed 20 Mar 2021.
Subirana I, Sanz H, Vila J. Building Bivariate tables: the compareGroups package for R. J Stat Softw. 2014;57(12):1–16.
Senturklu S, Landblom D, Maddock R, Petry T, Wachenheim C, Paisley S. Effect of yearling steer sequence grazing of perennial and annual forages in an integrated crop and livestock system on grazing performance, delayed feedlot entry, finishing performance, carcass measurements, and systems economics. J Anim Sci. 2018;24:96.
Bruhn FRP, Daher DO, Lopes E, Barbieri JM, da Rocha CMBM, Guimarães AM. Factors associated with seroprevalence of Neospora caninum in dairy cattle in southeastern Brazil. Trop Anim Health Prod. 2013;45(5):1093–8.
Appelt MA, da Silva AS, Cazarotto CJ, Machado G, Rodrigues RS, Norbury LJ, et al. Cholinesterase as an inflammatory marker of subclinical infection of dairy cows infected by Neospora caninum and risk factors for disease. Comp Immunol Microbiol Infect Dis. 2019;1(66):101330.
Ribeiro CM, Soares IR, Mendes RG, de Santis Bastos PA, Katagiri S, Zavilenski RB, et al. Meta-analysis of the prevalence and risk factors associated with bovine neosporosis. Trop Anim Health Prod. 2019;51(7):1783–800.
Nijsse R, Mughini-Gras L, Wagenaar JA, Franssen F, Ploeger HW. Environmental contamination with Toxocara eggs: a quantitative approach to estimate the relative contributions of dogs, cats and foxes, and to assess the efficacy of advised interventions in dogs. Parasites Vectors. 2015;8:397.
Macpherson CNL. The epidemiology and public health importance of toxocariasis: a zoonosis of global importance. Int J Parasitol. 2013;43(12–13):999–1008.
Pozio E. How globalization and climate change could affect foodborne parasites. Exp Parasitol. 2020;208:107807.
Mahdy OA, Mousa WM, Abdel-Maogood SZ, Nader SM, Abdel-Radi S. Molecular characterization and phylogenetic analysis of toxocara species in dogs, cattle and buffalo in Egypt. Helminthologia. 2020;57(2):83–90.
Roberts JA. The extraparasitic life cycle of Toxocara vitulorum in the village environment of Sri Lanka. Vet Res Commun. 1989;13(5):377–88.
Silva D, Santana A, Pizauro LJL, Bernardes P, Clemente V, Silveira C, et al. Toxocara vitulorum in newborn buffalo calves. Investigação. 2015;1(14):102–4.
Ribeiro MG, Langoni H, Jerez JA, Leite D da S, Ferreira F, Gennari SM. Identification of enteropathogens from buffalo calves with and without diarrhoea in the Ribeira Valley, State of São Paulo, Brazil. Braz J Vet Res Anim Sci. 2000;37(2).